Sclerotinia minor Jagger üzerine potansiyel biyokontrol ajanlarının değerlendirilmesi

Bu çalışma farklı bitkilerin rizosferik toprak bölgesinden izole edilen 38 bakteri izolatının ayçiçeğinde beyaz çürüklük etmenlerinden biri olan Sclerotinia minor Jagger’e karşı antagonistik etkilerini belirlemek amacıyla yapılmıştır. In vitro koşullarda test edilen bakterilerin yaklaşık %37’si orta ya da yüksek düzeyde patojenin misel gelişimini baskılamıştır. In vitro koşullarda patojeni yüksek düzeyde (%80-100) engelleyen bakteriler (Pseudomonas chlororaphis IDV5, Bacillus amyloliquefaciens IEB1, Bacillus cereus IPT3, Stenotrophomonas sp. IGL1, henüz teşhis edilememiş 2 bakteri izolatı (IFG1 ve IFG2)) daha sonra iklim odası koşullarında saksı çalışmaları ile test edilmiştir. Araştırma sonuçlarımıza göre saksı denemelerinde Pseudomonas chlororaphis dışında tüm bakteriler %100 etkili olmuştur. Ayrıca in vitro’da S. minor’e karşı etkisiz olmasına rağmen, daha önce yaptığımız farklı çalışmalarda in vivo koşullarda başarılı olduğunu tespit ettiğimiz Pseudomonas koreensis (IFG4)’de denemeye dahil edilmiş ve in vivo’da etkili bulunmuştur. Bu sonuç bazı rizosferik bakterilerin patojenin baskılanmasında rol oynayan bazı engelleyici özelliklerinin bitki ile bir araya geldiğinde ortaya çıktığını göstermektedir. Sonuç olarak çalışmamız biyolojik mücadelenin ayçiçeğinde toprak patojenlerini kontrol etmenin alternatiflerinden biri olduğunu ve bu antagonistik bakterilerin diğer özellikleri yönünden de araştırıldıktan sonra biyoajan olarak kullanılabileceğini ortaya koymaktadır.

[1]  M. Yusof,et al.  Plant Growth-Promoting Bacteria as an Emerging Tool to Manage Bacterial Rice Pathogens , 2021, Microorganisms.

[2]  P. Lovecká,et al.  Bacterial and fungal endophyte communities in healthy and diseased oilseed rape and their potential for biocontrol of Sclerotinia and Phoma disease , 2021, Scientific Reports.

[3]  S. Jain,et al.  Bacterial endophytes of rice (Oryza sativa L.) and their potential for plant growth promotion and antagonistic activities , 2020 .

[4]  M. Yıldırır,et al.  Mycelial compatibility groups, pathogenic diversity and biological control of Sclerotium rolfsii on turfgrass , 2019, Egyptian Journal of Biological Pest Control.

[5]  B. Tabassum,et al.  Bottlenecks in commercialisation and future prospects of PGPR , 2017 .

[6]  Adriana Ambrosini,et al.  Plant Growth-Promoting Bacteria (PGPB): Isolation and Screening of PGP Activities. , 2017, Current protocols in plant biology.

[7]  Dweipayan Goswami,et al.  Portraying mechanics of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR): A review , 2016 .

[8]  A. Testa,et al.  Chestnut green waste composting for sustainable forest management: Microbiota dynamics and impact on plant disease control. , 2016, Journal of environmental management.

[9]  L. Macías-Rodríguez,et al.  Characterization of the antifungal and plant growth-promoting effects of diffusible and volatile organic compounds produced by Pseudomonas fluorescens strains , 2015 .

[10]  A. Testa,et al.  Chestnut Biomass Biodegradation for Sustainable Agriculture , 2013 .

[11]  R. Brathwaite,et al.  Compost and compost tea: Principles and prospects as substrates and soil-borne disease management strategies in soil-less vegetable production , 2012 .

[12]  S. Gopalakrishnan,et al.  Evaluation of bacteria isolated from rice rhizosphere for biological control of charcoal rot of sorghum caused by Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid. , 2011, World journal of microbiology & biotechnology.

[13]  Y. Kim,et al.  Stenotrophomonas ginsengisoli sp. nov., isolated from a ginseng field. , 2010, International journal of systematic and evolutionary microbiology.

[14]  Amin Baghizadeh,et al.  Biological control of Sclerotinia sclerotiorum, causal agent of sunflower head and stem rot disease, by use of soil borne Actinomycetes isolates. , 2009 .

[15]  Mansour T. Abdullah,et al.  Biological control of Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary with Trichoderma harzianum and Bacillus amyloliquefaciens , 2008 .

[16]  Y. Zhang,et al.  Biological control of Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary by Pseudomonas and Bacillus species on canola petals , 2007 .

[17]  N. Labuschagne,et al.  Screening rhizobacteria for biological control of Fusarium root and crown rot of sorghum in Ethiopia , 2007 .

[18]  sung-taik lee,et al.  Stenotrophomonas koreensis sp. nov., isolated from compost in South Korea. , 2006, International journal of systematic and evolutionary microbiology.

[19]  B. Nelson,et al.  Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary: biology and molecular traits of a cosmopolitan pathogen. , 2006, Molecular plant pathology.

[20]  R. Noble,et al.  Suppression of soil-borne plant diseases with composts: A review , 2005 .

[21]  Guillermo Van Becelaere,et al.  Combining Ability for Resistance to Sclerotinia Head Rot in Sunflower , 2004 .

[22]  K. Subbarao,et al.  Vegetable Diseases Caused by Soilborne Pathogens , 2003 .

[23]  B. Glick,et al.  Methods for isolating and characterizing ACC deaminase-containing plant growth-promoting rhizobacteria. , 2003, Physiologia plantarum.

[24]  W. Achouak,et al.  Phenotypic and genomic evidence for the revision of Pseudomonas corrugata and proposal of Pseudomonas mediterranea sp. nov. , 2002, International journal of systematic and evolutionary microbiology.

[25]  H. C. Huang,et al.  Research on biology and control of Sclerotinia diseases in Canada1 , 2001 .

[26]  M. Dworkin,et al.  EXPERIMENTS WITH SOME MICROORGANISMS WHICH UTILIZE ETHANE AND HYDROGEN , 1958, Journal of bacteriology.