Entwicklungsstadien‐ und sippenspezifische Zellwand‐Autolysine bei der Freisetzung von Fortpflanzungszellen in der Gattung Chlamydomonas

Zusammenfassung Zellwand-Autolyse ist nach vorliegender Untersuchung in der Gattung Chlamydomonas ein normaler und streng stadienspezifischer Vorgang in der Ontogenese Zum Nachweis der beteiligten lyrischen Faktoren („Autolysine”) wurden einfache biologische Tests entwickelt Eine Freisetzung von Zoosporen aus den Sporangien mittels enzymatischer Sporangienwand-Autolyse lies sich bei 52 Stammen unterschiedlicher Herkunft von 42 Arten nachweisen und ist fur die Gattung als generelles Prinzip anzusehen Sekretion wie auch Wirksamkeit der Sporangienwand-Autolysine sind entwicklungsstadien-spezifisch: nur junge Zellen konnen das Autolysin sezernieren; mit dem Autolysin last sich nur die Sporangienwand lysieren, nicht aber die Wand von Zoosporen, vegetativen Zellen oder Gameten Mit Sporangienwand-Autolysinen von Arten, bei denen sowohl vegetative Zellen wie Sporangien von einer gallertigen „Kapsel” umgeben sind, lies sich diese Gallerte in jedem Entwicklungsstadium kurzfristig auflosen, ohne jedoch auch hier die eigentliche Zellwand vegetativer Zellen zu lysieren Hinsichtlich der Wirksamkeit der Sporangienwand-Autolysine auf Sporangien anderer Chlamydomonas-Arten ergab sich eine Sippen-Spezifitat, d. h. sie wirkten in der Regel nur innerhalb einer Gruppe morphologisch meist ahnlicher Arten, in einigen Fallen nur auf Sporangien des Erzeugerstammes. Nach der Wirkungsspezifitat ihrer Autolysine liesen sich die 52 aktiven Chlamydomonas-Stamme 15 Gruppen zuordnen Eine Autolysinwirksamkeit zwischen diesen Gruppen war in mehreren Fallen nachweisbar: die Autolysine von vier Gruppen wirkten im Biotest einseitig auch auf Sporangien der Stamme jeweils einer anderen Gruppe Arten mit gemeinsamem Sporangienwand-Autolysin stimmten auch in weiteren physiologischen und morphologischen Merkmalen uberein; offensichtlich handelt es sich um Gruppierungen naturlich verwandter Formen Es werden vier Modi der autolytischen Sporenfreisetzung beschrieben entsprechend dem unterschiedlichen Verhalten der Sporangienwande (totale oder partielle Lysis) und der Gallerten im Sporangieninneren Es wurden Methoden zur Isolierung und Reinigung von Sporangienwand-Praparaten fur 14 Chlamydomonas-Arten mit jeweils spezifischem Autolysin ausgearbeitet. Nach dunnschicht-chromatographischen Analysen von Hydrolysaten dieser Wandpraparate sind die Haupt-Zuckerkomponenten fast immer Galaktose und Arabinose, dazu kommen in geringerer Menge je nach Art in wechselnden Verhaltnissen Xylose, Fucose, Rhamnose, Uronsauren und eine nicht identifizierte Pentose; Glucose — und damit Cellulose — fehlt in der Regel oder ist nur in Spuren nachweisbar. Eine Ausnahme macht nur C. ulvaensis. Haupt-Zuckerkomponenten sind hier Xylose und Glucose; Galaktose und Arabinose sind nur in geringen Anteilen enthalten In Bestatigung einer fruheren Beobachtung von Claes (1971) wird die Wirksamkeit eines zweiten Autolysins im Entwicklungszyklus von Chlamydomonas nachgewiesen: Gameten der diozischen C. reinhardii sezernieren bei Geiselkontakt der Kreuzungspartner ein „Gametenwand-Autolysin”, das zum Abwurf der Gametenwande bei beiden Kreuzungstypen fuhrt. Es wurde eine verbesserte Methodik zur Gewinnung des Gametenwand-Autolysins erarbeitet Mit dem Gametenwand-Autolysin liesen sich die Wande aller Zellstadien der Art (Gameten, Zoosporen, vegetative Zellen, Sporangien), mit Ausnahme der Zygoten, total auflosen. Entsprechend dieser Eigenschaft des Gametenwand-Autolysins wurde — erstmals bei einzelligen Grunalgen — ein schonendes Verfahren zur Isolierung von Protoplasten fur Zellanalysen entwickelt Mit dem Gametenwand-Autolysin liesen sich nur bei den Stammen Protoplastenbildung und Sporangiolysis erzeugen, die ein gemeinsames Sporangienwand-Autolysin mit C. reinhardii besitzen; beide Autolysine stimmen also in der Sippenspezifitat ihrer Wirkung uberein Sporangienwand- und Gametenwand-Autolysine gleichen sich in den bisher gepruften Eigenschaften: sie sind fallbar mit (NH4)2SO4, nicht dialysierbar, temperaturlabil (inaktiviert nach 10 Min. 70 C), inaktivierbar mit 5 × 10−4 M HgCl2, mit der Proteinase Papain und meistens mit dem Komplexbildner Athylendiamin-tetraessigsaure In der Diskussion wird im Zusammenhang mit den Resultaten vorliegender Arbeit uber die Zusammensetzung der Zellwande bei den Volvocales, uber die Beteiligung von Autolysinen bei der Freisetzung von Fortpflanzungszellen aus Sporangien und Gametangien bei Pilzen und Algen sowie uber eine mogliche Berucksichtigung der Sippenspezifitat von Autolysinen fur ein naturliches System der Chlamydomonaden referiert

[1]  E. Hase,et al.  Studies on the vegetative life cycle of Chlamydomonas reinhardi Dangeard in synchronous culture IV. Effects of 6-methyl purine on the revolution of the cell cycle , 1975 .

[2]  L. Staehelin,et al.  THE ULTRASTRUCTURE OF SCENEDESMUS (CHLOROPHYCEAE). II. CELL DIVISION AND COLONY FORMATION 1 , 1975 .

[3]  I. Mellman,et al.  THE CHEMICAL COMPOSITION OF THE CELL WALL OF CHLAMYDOMONAS GYMNOGAMA AND THE CONCEPT OF A PLANT CELL WALL PROTEIN , 1974, The Journal of cell biology.

[4]  D. G. Müller,et al.  Sexuelle Fortpflanzung und Gameten‐Lockstoffe bei Braunalgen , 1974 .

[5]  K. Roberts,et al.  Crystalline glycoprotein cell walls of algae: their stucture, composition and assembly. , 1974, Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences.

[6]  S. J. Randall The electron microscopy and composition of biological membranes and envelopes - Closing remarks , 1974 .

[7]  D. Horowitz,et al.  Hormone-induced differentiation of antheridial branches in Achlya ambisexualis: dependence on ribonucleic acid synthesis. , 1974, Canadian journal of microbiology.

[8]  Mullins Jt,et al.  Sexual Morphogenesis in Achlya: Ultrastructural Basis for the Hormonal Induction of Antheridial Hyphae , 1974 .

[9]  L. Jaenicke,et al.  Purification and characterization of the hormone initiating sexual morphogenesis in Volvox carteri f. nagariensis Iyengar. , 1974, Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America.

[10]  R. A. Nolan,et al.  Cellulase Localization in Hyphae of Achlya ambisexualis , 1974, Journal of bacteriology.

[11]  Ph. Matile Regulation und Bedeutung der Sekretion von Hydrolasen , 1973, Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft.

[12]  H. Stosch Observations on vegetative reproduction and sexual life cycles of two freshwater dinoflagellates, Gymondinium pseudopalustre Schiller and Woloszynskia apiculata sp. nov. , 1973 .

[13]  J. T. Mullins,et al.  Hormonal Control of Sexual Morphogenesis in Achlya: Dependence on Protein and Ribonucleic Acid Syntheses , 1973, Science.

[14]  K. Keegstra,et al.  The Structure of Plant Cell Walls: I. The Macromolecular Components of the Walls of Suspension-cultured Sycamore Cells with a Detailed Analysis of the Pectic Polysaccharides. , 1973, Plant physiology.

[15]  S. Bartnicki-García,et al.  The Bursting Tendency of Hyphal Tips of Fungi: Presumptive Evidence for a Delicate Balance between Wall Synthesis and Wall Lysis in Apical Growth , 1972 .

[16]  D. Davies Electrophoretic analyses of wall glycoproteins in normal and mutant cells. , 1972, Experimental cell research.

[17]  B. Richardson,et al.  STRUCTURE AND COMPOSITION OF OOCYSTIS POLYMORPHA CELL WALLS ISOLATED FROM THE CULTURE MEDIUM 1 , 1972 .

[18]  D. Lamport,et al.  Hydroxyproline Heterooligosaccharides in Chlamydomonas , 1972, Science.

[19]  D. Robinson,et al.  The fine structure of Oocystis apiculata W. West with particular reference to the wall , 1972 .

[20]  R. C. Starr A working model for the control of differentiation during development of the embryo of Volvox carteri f. nagariensis , 1972 .

[21]  D. Lamport,et al.  Hydroxyproline arabinosides in the plant kingdom. , 1971, Plant physiology.

[22]  D. Davies,et al.  Electron Microscope and Optical Diffraction Studies on Isolated Cell Walls from Chlamydomonas , 1971, Nature.

[23]  N. Yanagishima Induced Production of a Sexual Hormone in Yeast , 1971 .

[24]  J. Burczyk,et al.  Presence of cellulase in the algae Scenedesmus. , 1970, Experimental cell research.

[25]  D. Lamport Cell Wall Metabolism , 1970 .

[26]  P. Matile,et al.  Role of Chitinase and Other Lysosomal Enzymes of Coprinus lagopus in the Autolysis of Fruiting Bodies , 1970 .

[27]  P. Mahadevan,et al.  Role of Enzymes in Growth and Morphology of Neurospora crassa: Cell-Wall-Bound Enzymes and Their Possible Role in Branching , 1970, Journal of bacteriology.

[28]  H. Kleinig,et al.  Cellulosic Wall Component Produced by the Golgi Apparatus of Pleurochrysis scherffelii , 1969, Science.

[29]  A. W. Barksdale Sexual hormones of Achlya and other fungi. , 1969, Science.

[30]  W. F. Millington,et al.  Pattern formation and the fine structure of the developing cell wall in colonies of Pediastrum boryanum. , 1969, American journal of botany.

[31]  J. Craigie,et al.  STUDIES ON THE ALGAL CUTICLE 1 , 1969, Journal of phycology.

[32]  Robert J. McLean REJUVENATION OF SENESCENT CELLS OF SPONGIOCHLORIS TYPICA 2 , 1969, Journal of phycology.

[33]  J. T. Mullins,et al.  Cellulase Induction and Wall Extension in the Water Mold Achlya ambisexualis , 1969 .

[34]  K. Iwasa,et al.  Palmelloid Formation of Chlamydomonas II. Mechanism of Palmelloid Formation by Organic Acids , 1969 .

[35]  J. Ghuysen Use of bacteriolytic enzymes in determination of wall structure and their role in cell metabolism , 1968 .

[36]  R. McLean ULTRASTRUCTURE OF SPONGIOCHLORIS TYPICA DURING SENESCENCE 1 2 , 1968, Journal of phycology.

[37]  H. Phaff,et al.  Exo-β-glucanases in yeast , 1968 .

[38]  R. Cleland,et al.  Differences in the occurrence and distribution of hydroxyproline-proteins among the algae. , 1968, American journal of botany.

[39]  G. Kochert Differentiation of reproductive cells in Volvox carteri. , 1968, The Journal of protozoology.

[40]  R. Preston Plants without Cellulose , 1968 .

[41]  H. C. Bold,et al.  ELECTRON AND PHASE‐CONTRAST MICROSCOPY OF SEXUAL REPRODUCTION IN CHLAMYDOMONAS MOEWUSII 1 , 1968, Journal of phycology.

[42]  R. C. Starr Cellular differentiation in Volvox. , 1968, Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America.

[43]  B. Johnson Lysis of Yeast Cell Walls Induced by 2-Deoxyglucose at Their Sites of Glucan Synthesis , 1968, Journal of bacteriology.

[44]  S. Karakashian,et al.  Electron Microscopic Observations on the Symbiosis of Paramecium bursaria and its Intracellular Algae , 1968 .

[45]  J. Oschman STRUCTURE AND REPRODUCTION OF THE ALGAL SYMBIONTS OF HYDRA VIRIDIS 1 , 1967, Journal of phycology.

[46]  D. Lamport,et al.  Hydroxyproline-O-glycosidic Linkage of the Plant Cell Wall Glycoprotein Extensin , 1967, Nature.

[47]  T. R. Deason,et al.  CHLAMYDOMONAS GYMNOGAMA, A NEW HOMOTHALLIC SPECIES WITH NAKED GAMETES 1 , 1967, Journal of phycology.

[48]  J. T. Mullins,et al.  Role of Enzymatic Wall-Softening in Plant Morphogenesis: Hormonal Induction in Achlya , 1967, Science.

[49]  E. W. Thompson,et al.  Proteins in the Cell Walls of Some Green Algae , 1967, Nature.

[50]  W. R. Bowen Ultrastructural Aspects of the Cell Boundary of Haematococcus pluvialis , 1967 .

[51]  J. Stein,et al.  THE DEVELOPMENT OF CYTOPLASMIC BRIDGES IN VOLVOX AUREUS , 1966 .

[52]  J. Carefoot SEXUAL REPRODUCTION AND INTERCROSSING IN VOLVULINA STEINW 1 , 1966, Journal of phycology.

[53]  G. P. Skucas STRUCTURE AND COMPOSITION OF ZOOSPORANGIAL DISCHARGE PAPILLAE IN THE FUNGUS ALLOMYCES , 1966 .

[54]  R W Hoshaw,et al.  CHLAMYDOMONAS SMITHII SP. NOV.–A CHLAMYDOMONAD INTERFERTILE WITH CHLAMYDOMONAS REINHARDTIP , 1966, Journal of phycology.

[55]  I. Friedmann,et al.  RADIOSPHAERA NEGEVENSIS SP. N., A NEW CHLOROCOCCALEAN DESERT ALGA , 1966 .

[56]  C. Price,et al.  "Spheroplasts" prepared from Euglena gracilis by proteolysis. , 1966, The Journal of protozoology.

[57]  W. H. Darden Sexual differentiation in Volvox aureus. , 1966, The Journal of protozoology.

[58]  H. Ettl Über systematische Probleme in der Gattung Chlamydomonas , 1966 .

[59]  R. Mitchell,et al.  Autolytic enzymes in fungal cell walls. , 1966, Journal of general microbiology.

[60]  M. Sassen BREAKDOWN OF THE PLANT CELL WALL DURING THE CELL‐FUSION PROCESS , 1965 .

[61]  T. D. Brock,et al.  Electron Microscopy of Cell Fusion in Conjugating Hansenula wingei , 1965, Journal of bacteriology.

[62]  C. Lembi,et al.  ELECTRON MICROSCOPY OF CARTERIA AND CHLAMYDOMONAS , 1965 .

[63]  B. Parker The Structure and Chemical Composition of Cell Walls of Three Chlorophycean Algae , 1964 .

[64]  R. Preston,et al.  Non-cellulosic structural polysaccharides in algal cell walls - II. Association of xylan and mannan in Porphyra umbilicalis , 1964, Proceedings of the Royal Society of London. Series B. Biological Sciences.

[65]  J. O'Kelley,et al.  THE EFFECTS OF REPLACEMENT OF CALCIUM BY STRONTIUM ON THE REPRODUCTION OF CHLOROCOCCUM ECHINOZYGOTUM , 1964 .

[66]  J. Kirk The Effect of Trypsin on the Pellicle of Euglena gracilis , 1964 .

[67]  G. Chapman,et al.  CELL WALL FORMATION IN PEDIASTRUM BIRADIATUM AS REVEALED BY THE ELECTRON MICROSCOPE , 1963 .

[68]  N. J. Lang ELECTRON MICROSCOPY OF THE VOLVOCACEAE AND ASTREPHOMENACEAE , 1963 .

[69]  T. R. Deason,et al.  EFFECT OF NITROGEN, SULFUR AND OTHER FACTORS ON ZOOSPORE PRODUCTION BY PROTOSIPHON BOTRYOIDES , 1962 .

[70]  R. Preston,et al.  Variants in the Structural Polysaccharides of Algal Cell Walls , 1961, Nature.

[71]  C. Rouiller,et al.  La Structure Fine de Chlorogonium elongatum. I. Etude Systematique au Microscope Electronique. , 1961 .

[72]  T. D. Brock Physiology of the conjugation process in the yeast Hansenula wingei. , 1961, Journal of general microbiology.

[73]  J. O'Kelley,et al.  ALKALINE EARTH ELEMENTS AND ZOOSPORE RELEASE AND DEVELOPMENT IN PROTOSIPHON BOTRYOIDES , 1961 .

[74]  D. Northcote,et al.  The chemical composition and structure of the cell wall of Hydrodictyon africanum Yaman. , 1960, The Biochemical journal.

[75]  B. C. SHARMAN Volvox Colonies and Snail ‘Cytase’ , 1960, Nature.

[76]  M. Pocock HAEMATOCOCCUS IN SOUTHERN AFRICA , 1960 .

[77]  J. O'Kelley,et al.  Effect of Strontium Replacement for Calcium on Production of Motile Cells in Protosiphon , 1959, Science.

[78]  A. Coleman Sexual Isolation in Pandorina morum , 1959 .

[79]  J. M. Aronson,et al.  THE CHEMICAL COMPOSITION OF THE HYPHAL WALLS OF THE FUNGUS ALLOMYCES , 1959 .

[80]  F. R. Trainor A COMPARATIVE STUDY OF SEXUAL REPRODUCTION IN FOUR SPECIES OF CHLAMYDOMONAS , 1959 .

[81]  D. Northcote,et al.  The chemical composition and structure of the cell wall of Chlorella pyrenoidosa. , 1958, The Biochemical journal.

[82]  R. Sager,et al.  Structure and development of the chloroplast in Chlamydomonas. I. The normal green cell. , 1957 .

[83]  R. Lewin EXTRACELLULAR POLYSACCHARIDES OF GREEN ALGAE , 1956 .

[84]  O. Nečas Regeneration of Yeast Cells from Naked Protoplasts , 1956, Nature.

[85]  J. D. Levi Mating Reaction in Yeast , 1956, Nature.

[86]  R. Sager,et al.  NUTRITIONAL CONTROL OF SEXUALITY IN CHLAMYDOMONAS REINHARDI , 1954, The Journal of general physiology.

[87]  R. Lewin The primary zygote membrane in Chlamydomonas moewusii. , 1952, Journal of general microbiology.

[88]  R. Lewin,et al.  Cell-wall structure in Chlamydomonas , 1951 .

[89]  H. Cowles Researches on Fungi , 1911, Nature.

[90]  G. Klebs Die Bedingungen der Fortpflanzung bei einigen Algen und Pilzen , 1896 .